Page 61 - 《中国药房》2025年18期
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结肠内滴注4%乙酸溶液1 mL(抬高尾巴的同时按压其 2.6 结肠组织病理学变化观察
肛门,以保证溶液充分进入大鼠体内,持续60 s);与此同 采血完成后,各组大鼠以颈椎脱位法处死,分离其
时,大鼠每天进行束缚应激,即将其置于自制的束缚笼 结肠,取一部分冻存,备用。取另一部分,用生理盐水洗
中限制活动1 h后再进行5 min的夹尾操作,随后再将大 涤后固定在4%多聚甲醛溶液中,经脱水后以石蜡包埋,
鼠置于饲养笼中自由活动,共持续 8 d。若大鼠腹壁撤 切片(厚约 5 μm)。取切片,经干燥、脱蜡后,依次用苏
退反射(abdominal withdrawal reflex,AWR)评分(包括无 木精、伊红染色,经脱水、封片后,使用倒置显微镜观察
反应的正常行为、腹肌收缩、腹壁抬高、背弓和骨盆结构 其结肠组织病理学变化。
抬高评分)不低于3分,且粪便性状评分、粪便含水量均 2.7 结肠组织中紧密连接蛋白、闭合蛋白 mRNA 表达
显著高于对照组,则表示 IBS-D 模型构建成功 [9―10] 。对
检测
照组大鼠以生理盐水替代乙酸溶液灌肠,且不进行束缚
采用实时荧光定量PCR(real-time quantitative PCR,
应激。
RT-qPCR)法检测。取“2.6”项下各组大鼠冻存的结肠组
将造模成功的大鼠随机分为 IBS-D 组、中药组、阳
织适量,以 TRIzol 试剂提取总 RNA,待测定浓度和纯度
性对照药组、激活剂组、中药+激活剂组,每组10只。其
后,将其逆转录为 cDNA,然后以此 cDNA 为模板进行
中,中药组大鼠灌胃15 g/kg(以生药总量计)的黄芪建中
PCR 扩增。PCR 反应体系包括 cDNA 模板(2 μL),
汤 ,并同时尾静脉注射等体积生理盐水;阳性对照药
[11]
SYBR Premix Ex TaqⅡ聚合酶(9 μL),正、反向引物(各
组大鼠灌胃 150 mg/kg 的利福昔明片药液(以水为溶
[12]
剂) ,并同时尾静脉注射等体积生理盐水;激活剂组大 0.3 μL),ddH2O(8.4 μL)。PCR 反应条件为:95 ℃预变
[13]
鼠尾静脉注射125 μg/kg的anisomycin ,并同时灌胃等 性 30 s;95 ℃变性 5 s,62 ℃退火、延伸 20 s,共 40 个循
体积生理盐水;中药+激活剂组大鼠灌胃15 g/kg的黄芪 环。以 β-actin 为内参,采用 2 -ΔΔCt 法计算紧密连接蛋白
建中汤,并同时尾静脉注射 125 μg/kg 的 anisomycin;对 ZO-1、闭合蛋白(occludin)mRNA 的表达水平。β-actin
照组和 IBS-D 组大鼠灌胃并同时尾静脉注射等体积生 的正向引物为 5′-GAAGTGTGACGTTGACATCCG-3′,
理盐水。所有大鼠每天灌胃/尾静脉注射1次,连续2周。 反向引物为 5′-GATCCACATCTGCTGGAAG-3′,产物
2.3 粪便含水量计算及粪便性状评分评估 长度为 94 bp;ZO-1 的正向引物为 5′-ATTCAGGTCG-
末次给药后,收集各组大鼠的24 h粪便,立即称重, CTCGCATGAC-3′,反向引物为 5′-ACTGCGTGGAAT-
得湿重;随后,于 80 °C 下干燥 10 h,再次称重,得干重; GATCGGAG-3′,产物长度为 114 bp;occludin 的正向引
以“(粪便湿重-粪便干重)/粪便湿重×100%”计算粪便 物为5′-CTCGGTACAGCAGCAATGGT-3′,反向引物为
含水量。 5′-GGCTTCCTGTTGGTGATGTC-3′,产物长度为105 bp。
末次给药后的当天,观察各组大鼠的排便情况并进 2.8 结肠组织中MAPK/NF-κB信号通路相关蛋白表达
行粪便性状评分,具体标准为:大便干硬,排出较为困 检测
难,记 1 分;大便成形,呈团状块,记 2 分;大便表面有裂 采用Western blot法检测。取“2.6”项下各组大鼠冻
缝,呈香肠状,记3分;大便柔软,呈香肠状,记4分;大便 存的结肠组织适量,经裂解、匀浆后,于冰上超声,提取
容易排出,呈软团状块,记5分;大便为糊状,边缘毛躁, 结肠组织中的总蛋白,以 BCA 法测定蛋白浓度后,于
[8]
记6分;水样便,无固定形状,记7分 。
100 °C 下煮沸、变性。取变性蛋白,进行 10% 十二烷基
2.4 最小容量阈值检测
硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,再转移至聚偏二氟
收集粪便后,各组大鼠均禁食18 h,以戊巴比妥(30
乙烯膜上,封闭;洗膜后,加入p-p38 MAPK、p-NF-κB p65、
mg/kg)腹腔注射麻醉后,将经石蜡油润滑的球囊导管轻
p38 MAPK、NF-κB p65、β-actin 一抗(稀释比例均为
轻插入其肛门,并将连接的管子用胶带固定在大鼠的尾
1∶1 000),于4 ℃下孵育过夜;洗膜后,加入相应二抗(稀
巴上,待大鼠适应 30 min 后将其放入透明容器中,通过
释比例均为1∶2 000),于室温下孵育2 h;洗膜后,加入电
导管将水注射至球囊中,每次注射持续30 s。当大鼠腹
化学发光试剂显影、成像。使用 Image J 软件分析和量
肌强烈收缩、腹部明显抬离平面、AWR评分为3分时,记
化图像,以 β-actin 为内参,以各目的蛋白与内参蛋白的
录对应的注水量,即为最小容量阈值,以评估大鼠的内
脏敏感性(两者成反比) 。 灰度值比值作为目的蛋白的表达水平,再以p-p38 MAPK
[12]
2.5 血清中炎症因子水平检测 与p38 MAPK、p-NF-κB p65与NF-κB p65的表达水平比
上述检测完成后,各组大鼠同法麻醉后,以仰卧位 值作为p38 MAPK、NF-κB p65蛋白的磷酸化水平。
固定,打开其腹腔,经腹主动脉取血(5 mL)。血样以 2.9 统计学方法
4 500 r/min 离心 5 min,分离上层血清,按相应试剂盒说 采用SPSS 27.0软件对数据进行统计分析。实验数
明书操作,采用酶标仪检测其血清中TNF-α、IL-1β、IL-6 据以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一
水平。 步两两比较采用SNK-q检验。检验水准α=0.05。
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