Page 66 - 《中国药房》2025年6期
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2.3 miR-154-5p/CCND1 轴与 LncRNA MALAT1 靶向 白与GAPDH条带灰度值的比值表示目标蛋白的相对表
关系的验证 达量。
2.3.1 细胞分组与转染 2.3.7 LncRNA MALAT1、miR-154-5p、CCND1 相互作
将 10% 胎牛血清加入含 0.1 μmol DOX(根据“2.1” 用检测
项下结果确定)的 DMEM 培养基,培养 MG-63/DOX 细 采用双荧光素酶报告基因实验检测。将 LncRNA
胞,每 2~3 d 进行换液。取对数生长期的 MG-63/DOX MALAT1-野生型(wild type,WT)和 LncRNA MALAT1-
细胞分为 Control 组(正常培养)、sh-NC 组、sh-MALAT1 突变型(mutated type,MUT)、CCND1-MUT 和 CCND1-
组、sh-MALAT1+anti-NC 组、sh-MALAT1+anti-miR-154- WT 片段分别克隆到 pmirGLO 载体中,再与 miR-154-5p
5p组,分别转染相应质粒。 模拟物(mimic)和其阴性对照(mimic-NC)共转染到
2.3.2 LncRNA MALAT1、miR-154-5p、CCND1 mRNA MG-63/DOX细胞中,48 h后检测荧光素酶活性,以分析
检测 LncRNA MALAT1与miR-154-5p、miR-154-5p与CCND1
采用“2.2”项下方法检测各组 MG-63/DOX 细胞中 之间的相互作用。
LncRNA MALAT1、miR-154-5p( 内 参 U6)、CCND1 2.4 统计学分析
mRNA(内参GAPDH)的相对表达量,以验证转染效率。 采用SPSS 25.0软件进行数据分析。满足正态分布
2.3.3 MG-63/DOX细胞增殖检测 的计量资料以 x±s 表示,多组间比较采用方差分析,进
采用 CCK-8 法检测。根据“2.3.1”项下方法将 MG- 一步两两比较使用 LSD-t 检验;两组间比较采用独立样
63/DOX 细胞进行分组,再按“2.1”项下操作检测各组细 本t检验。检验水准α=0.05。
胞的增殖情况,并计算细胞存活率。 3 结果
2.3.4 MG-63/DOX细胞迁移和侵袭检测 3.1 不同浓度 DOX 中 MG-63 和 MG-63/DOX 细胞存
(1)采用划痕实验检测。根据“2.3.1”项下方法进行 活率比较
分组,接种 500 个 MG-63/DOX 细胞于 6 孔板至 80%~ 与 0 μmol/L DOX 组比较,0.01、0.05、0.1、1 μmol/L
90% 融合时,用 10 μL 移液器枪头取细胞悬浮液在培养 DOX 组 MG-63 细胞和 MG-63/DOX 细胞(0.01 μmol/L
皿中间划痕,于 0、24 h 在显微镜下观察细胞的形态变 DOX 组除外)存活率均显著降低(P<0.05),详见表 2。
化,并计算划痕愈合率。划痕愈合率(%)=(初始划痕 经计算,DOX 对 MG-63 细胞的 IC50 为 0.07 μmol/L,对
宽度-细胞迁移距离)/初始划痕宽度×100%。 MG-63/DOX细胞的IC50为0.13 μmol/L。
(2)采用Transwell实验检测。根据“2.3.1”项下方法 表2 不同浓度 DOX 中 MG-63 和 MG-63/DOX 细胞存
将 MG-63/DOX 细胞进行分组。在侵袭实验上室预涂 活率比较(x±s,n=6,%%)
Matrigel 基质胶,收集转染的 MG-63/DOX 细胞,将细胞 DOX浓度/(μmol/L) MG-63细胞 MG-63/DOX细胞
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重悬于 200 μL 无血清培养基中,以 2×10 个/孔加入上 0 100 100
0.01 84.52±9.08 a 91.85±9.49
室,下室加入500 μL含20%胎牛血清的培养基,孵育36
0.05 63.59±8.16 a 76.54±8.27 a
h 后,固定上室膜并染色,在显微镜下随机选择 5 个视 0.1 39.28±7.43 a 53.85±7.32 a
野,统计迁移或侵袭细胞数。 1 21.32±6.27 a 32.59±6.34 a
2.3.5 MG-63/DOX细胞凋亡检测 a:与0 μmol/L组比较,P<0.05。
采用流式细胞仪检测。根据“2.3.1”项下方法将 3.2 MG-63 和 MG-63/DOX 细 胞 LncRNA MALAT1
MG-63/DOX 细胞进行分组。收集细胞,重悬调整密度 mRNA表达检测结果
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为1.0×10 个/mL,加入100 μL含有Annexin Ⅴ-FITC/PI MG-63/DOX细胞中LncRNA MALAT1 mRNA相对
的溶液中,室温孵育 20 min 后,加入 500 μL 孵育缓冲 表达量显著高于MG-63细胞(2.36±0.35 vs.1.00±0.32,
液,检测细胞凋亡情况,计算细胞凋亡率。细胞凋亡 P<0.05)。
率=(凋亡细胞数/总细胞数)×100%。 3.3 敲低 LncRNA MALAT1 对 MG-63/DOX 细胞中
2.3.6 MG-63/DOX细胞中PCNA、CCND1蛋白表达检测 DOX耐药相关mRNA表达的影响
采用 Western blot 法检测。根据“2.3.1”项下方法将 sh-MALAT1 组 MG-63/DOX 细 胞 中 LncRNA
MG-63/DOX 细胞进行分组。采用改良的 RIPA 裂解液 MALAT1、CCND1 mRNA 相对表达量显著低于 Control
和苯甲基磺酰氟裂解细胞,提取蛋白质,采用BCA法检 组、sh-NC 组,miR-154-5p 相对表达量显著高于 Control
测蛋白浓度,再用 10% 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝 组、sh-NC组(P<0.05);sh-MALAT1+anti-miR-154-5p组
胶电泳分离,转移到聚偏氟乙烯膜上与 GAPDH(稀释 MG-63/DOX 细胞中 CCND1 mRNA 相对表达量显著高
度 1∶1 000)、PCNA(稀释度 1∶5 000)、CCND1(稀释度 于 sh-MALAT1 组、sh-MALAT1+anti-NC 组,miR-154-5p
1∶500)特异性抗体共同孵育,再加入二抗(稀释度 1∶ 相对表达量显著低于 sh-MALAT1 组、sh-MALAT1+anti-
1 000),室温孵育1 h。采用Image J 软件分析,以目标蛋 NC组(P<0.05)。结果见表3。
· 700 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 6 中国药房 2025年第36卷第6期