Page 38 - 《中国药房》2024年10期
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2.2 大鼠分组、建模与给药 源性过氧化氢酶,用 3% 牛血清白蛋白室温封闭 1 h,
大鼠适应性喂养 1 周后,按照随机数字表法分为假 然后滴加 BNIP3、Beclin-1 一抗(稀释比分别为 1∶200、
手术组(10 只)及造模组(40 只)。参照文献及本课题组 1∶100),于4 ℃孵育过夜;以PBS洗涤后滴加二抗(稀释
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既往建模方法 ,采用双上肢去势联合椎间盘刺破纤维 比为 1∶200),DAB 显色,苏木精复染 3 min,经乙醇梯度
环的方式建立LDH大鼠模型。术后2 d(干预前),每组 脱水、二甲苯透明、中性树胶封片。在显微镜下每张切
随机选取2只大鼠,进行磁共振成像(MRI)扫描检查,大 片随机选取 3 个视野,采用 Image J 软件分析 BNIP3、
鼠 L4-L5、L5-L6 髓核呈低信号、与纤维环界限模糊即为 Beclin-1阳性细胞百分比(以棕黄色为阳性表达)。
LDH 造模成功。将造模成功的大鼠随机分为模型组、 2.8 大鼠椎间盘组织中 NF-κB p65、p-NF-κB p65、
NF-κB抑制剂组(QNZ组)、YQHX组及联合组(YQHX+
TRAF-2、TRAF-3、BNIP3及LC3B蛋白表达检测
QNZ组),每组10只。术后3 d,按照人与大鼠体表面积
采用蛋白质印迹法检测。取“2.4”项下各组 3 只大
换算公式计算给药剂量,QNZ 组大鼠腹腔注射 1 mg/kg
鼠冻存的椎间盘组织,以蛋白裂解液裂解,用BCA法测
QNZ,YQXH 组大鼠灌胃 9.1 g/kg(以生药量计,前期研
定蛋白浓度后于 95 ℃变性 10 min。取变性蛋白,电泳
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究证实的最佳干预剂量 )YQHX,YQHX+QNZ 组大鼠
分离,转至聚偏二氟乙烯膜上,以5%脱脂奶粉封闭2 h,
同时灌胃 YQHX(9.1 g/kg)及腹腔注射 QNZ(1 mg/kg),
加 入 NF- κB p65、p-NF- κB p65、TRAF-2、TRAF-3、
假手术组和模型组大鼠灌胃等体积生理盐水,每天给药
BNIP3、LC3B 及 β-actin(内参蛋白)一抗(目的蛋白稀释
1次,连续8周。
比均为1∶1 000,内参蛋白稀释比为1∶10 000),于4 ℃孵
2.3 大鼠椎间盘突出严重程度评估
育过夜;洗膜后加入二抗(稀释比为1∶10 000),于37 ℃
末次给药结束 24 h 后,每组随机取 3 只大鼠,经 4%
孵育 1 h 后,以 ECL 化学发光液显色,采用 Image J 软件
异氟烷诱导麻醉,然后进行MRI扫描检查,在T2WI序列
下对 L4-L5、L5-L6椎间盘突出严重程度进行 Pfirrmann 分 对目的蛋白的表达水平进行定量分析,以目的蛋白与内
级评分 。 参蛋白的灰度值比值表示目的蛋白的表达水平,再以
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2.4 样品采集及大鼠椎间盘组织形态学观察 p-NF-κB p65 与 NF-κB p65 蛋白的表达水平比值表示
MRI 扫描结束后,各组大鼠于腹主动脉采血 3 mL, NF-κB p65磷酸化水平。
以 3 500 r/min 离心 15 min,分离上层血清,于-80 ℃保 2.9 大鼠椎间盘组织中NF-κB p65、LC3B、p62、BNIP3
存,备用。大鼠脱颈处死,取下附带椎骨的L4-L5、L5-L6椎 及Beclin-1 mRNA表达的检测
间盘,用磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗,于-80 ℃保存,备 采用实时定量 PCR 法检测。取“2.4”项下各组 3 只
用;随机选取6只大鼠椎间盘组织,置于4%多聚甲醛固 大鼠冻存的椎间盘组织,采用柱提法提取总 RNA,并将
定后,脱钙、石蜡包埋,制成4 μm切片。每组随机选取3 其反转录成cDNA进行PCR扩增。PCR反应条件:95 ℃
张切片,HE 染色后,常规脱水、透明、封片,在显微镜下 预变性30 s;95 ℃变性30 s,60 ℃退火延伸15 s,共40个
观察大鼠的椎间盘组织形态学变化并采集图像。 循环,12 ℃保温 40 min。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(gly-
2.5 大鼠髓核细胞自噬观察 ceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)为 内
取“2.4”项下各组大鼠椎间盘组织切片,用PBS冲洗 参,根据 2 -ΔΔCt 法计算 NF-κB p65、LC3B、p62、BNIP3 及
后,以3%戊二醛和1%锇酸固定5 h,然后样品用环氧树
Beclin-1 mRNA的表达水平。PCR引物序列及扩增产物
脂包埋,制成50 nm超薄切片。每组随机选取3张切片,
见表1。
再用2%醋酸铀和0.2%柠檬酸铅染色后,在透射电子显
表1 引物序列及扩增产物
微镜下观察髓核细胞自噬情况并采集图像。
基因 引物序列(5′→3′) 扩增产物/bp
2.6 大鼠血清中TNF-α水平检测 GAPDH 正向引物TGGTATCGTGGAAGGACTCATGAC 185
取“2.4”项下各组大鼠的血清样品,解冻后,按照 反向引物ATGCCAGTGAGCTTCCCGTTCAGC
NF-κB p65 正向引物AGTGTTCACAGACCTGGCATC 256
ELISA 试剂盒说明书操作,以酶标仪检测大鼠血清中 反向引物TCACCAGGCGAGTTATAGCTT
TNF-α在450 nm波长处的吸光度值,利用标准曲线计算 LC3B 正向引物TGTATCCACACCCATCGCTGACA 178
反向引物CTGACCAGAACTCCCAGCCACC
TNF-α水平。
p62 正向引物CCTGAACTCATGGCTGAGA 183
2.7 大鼠椎间盘组织中 BNIP3、Beclin-1 阳性细胞百分 反向引物GTCCAAATAATTCTCCTCGTCATC
比检测 BNIP3 正向引物CTGTCTCATCTGTTAGCCATTG 237
反向引物CACAGCTCAGCGTGAATC
采用免疫组织化学法检测。取“2.4”项下各组 3 只 Beclin-1 正向引物ATGCACAGATACTCTTTTAGACC 280
大鼠椎间盘组织切片,常规脱水,用3%过氧化氢阻断内 反向引物AACAGCGTTTGTAGTTCTGACA
· 1188 · China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 10 中国药房 2024年第35卷第10期