Page 38 - 《中国药房》2021年23期
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阜康生物科技股份有限公司,实验动物生产许可证号为 项下于 4%多聚甲醛溶液中浸泡 24 h 的大鼠心肌组织,
SCXK(京)2020-0004。大鼠购入后饲养于温度 22~ 常规制备石蜡切片(厚度为 4 μm),然后行常规 HE 染
25 ℃、相对湿度 40%~60%的动物房中。本研究中动 色。将染色后的组织切片置于显微镜下观察(心肌细胞
物实验方案经华北理工大学实验动物伦理委员会审查 核呈蓝色、细胞质呈红色)。
批准后实施(批准号为LX2019084)。 2.7 心肌细胞凋亡指数测定
2 方法 每组随机选取3个样本,采用TUNEL染色法进行测
2.1 T2DM大鼠模型的建立 定。取“2.4”项下于20%蔗糖溶液中保存的大鼠心肌组
将 60 只大鼠适应性喂养 1 周后分为正常组(n=8) 织,用 OTC 包埋剂包埋后冰冻切片,将切片用 4%多聚
和造模组(n=52)。正常组大鼠饲以正常饲料,造模组 甲醛溶液固定30 min;用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤2次,
大鼠饲以高糖高脂饲料。饲养4周后,造模组大鼠一次 加入含 0.5%Triton X-100 的 PBS,于室温孵育 5 min;用
性腹腔注射 30 mg/kg STZ 溶液(pH=4.4),正常组大鼠 PBS 洗涤 2 次,滴加 TUNEL 检测液,于 37 ℃避光孵育
腹腔注射等体积的生理盐水。3 d 后,检测造模组大鼠 60 min;用 DAPI 封片,然后置于荧光体式显微镜下观
的空腹血糖值,以空腹血糖值≥11.1 mmol/L 为判断 察(凋亡细胞呈绿色荧光,细胞核呈蓝色荧光)。采用
T2DM 模型构建成功的标准 。结果,本研究的成模率 Image J 1.46r软件记录每个视野中的凋亡细胞数量和总
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约为92%(共有48只大鼠建模成功)。 细胞数量,计算心肌细胞凋亡指数:凋亡指数(%)=(凋
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2.2 动物分组与给药 亡细胞数/细胞总数)×100% 。
将造模成功的 40 只大鼠按随机数表法随机分为模 2.8 心肌组织中Bax、Bcl-2、caspase-3蛋白表达测定
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型组、阳性对照组(二甲双胍 90 mg/kg )和芍药苷高、 2.8.1 免疫组化法测定 每组随机选取3个样本进行实
中、低剂量组(90、60、30 mg/kg ),每组8只。正常组和 验。按“2.6”项下方法制备石蜡切片,以二甲苯和梯度乙
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模型组大鼠灌胃生理盐水,各给药组大鼠灌胃相应药液 醇进行脱蜡和水合后,滴加 EDTA 溶液进行抗原修复;
(均以生理盐水为溶剂溶解),灌胃体积均为7.5 mL/kg, 滴加3%过氧化氢溶液,于室温静置15 min;用PBS冲洗
每天 1 次,连续 4 周。灌药期间正常组大鼠继续饲以正 3次、每次5 min,然后加入Bax一抗(稀释比例1∶1 000)、
常饲料,其余各组大鼠均继续饲以高糖高脂饲料。 Bcl-2一抗(稀释比例1∶2 000)、caspase-3一抗(稀释比例
2.3 体质量、空腹血糖值测定和口服葡萄糖耐量实验 1 ∶ 5 000),于 4 ℃孵育过夜;滴加 HRP 标记的山羊抗兔/
在灌胃前及灌胃第 1、2、3、4 周时,分别测定大鼠体 小鼠 IgG 二抗,于室温孵育 10 min;用 PBS 冲洗 3 次、每
质量。在灌胃前和灌胃第4周时,分别测定大鼠的空腹 次5 min,进行DAB 显色,然后以苏木精复染;用水冲洗
血糖值(空腹血糖值测定前,大鼠先禁食不禁水 12 h)。 后,再进行脱水、封片,然后将组织切片置于显微镜下进
在第4周灌胃结束后进行大鼠口服葡萄糖耐量实验:按 行观察(目标蛋白的阳性表达呈棕褐色),并采用 Image
2 g/kg 的剂量灌胃大鼠 50%葡萄糖注射液,分别于灌胃 J 1.46r软件分析各蛋白的平均光密度值(平均光密度值
葡萄糖注射液后第0、15、30、45、60、120 min时测定大鼠 越大,表示蛋白表达水平越高)。
血糖值,并计算血糖的曲线下面积(AUC):AUC=[(血 2.8.2 Western blot 法测定 每组随机选取 3 个样本进
糖值 0 min+血糖值 30 min )×15/60+(血糖值 30 min+血糖值 60 min )× 行实验。取“2.4”项下冻存的大鼠心肌组织,加入 RIPA
15/60+(血糖值 60 min+血糖值 120 min )×30/60] 。 裂解液提取组织中的总蛋白,按照BCA蛋白定量试剂盒
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2.4 样本取材及处理 说明书方法测定蛋白的质量浓度后,将蛋白在100 ℃条
口服葡萄糖耐量实验后,于大鼠腹主动脉采血5 mL, 件下加热变性。取变性后蛋白进行十二烷基硫酸钠-聚
然后以3 000 r/min离心血样10 min,收集血清,于 -80 ℃ 丙烯酰胺凝胶电泳(分离胶电压80 V,浓缩胶电压120 V,
保存,备用。取血后,将大鼠处死,取其心肌组织,以冰 电泳时间 105 min),然后电转至聚偏二氟乙烯膜上
生理盐水冲洗后用滤纸吸干。将一部分心肌组织置于 (电流220 mA,转膜时间1 h),加入牛血清白蛋白(BSA)
4%多聚甲醛溶液中浸泡 24 h;将另一部分心肌组织放 封闭液封闭 2 h;用 TBST 洗膜 3 次、每次 10 min,分别加
入20%蔗糖溶液中;将剩余的心肌组织迅速置于液氮中 入β-actin 一抗(稀释比例 1 ∶ 1 000)、Bax 一抗(稀释比例
保存,然后转至-80 ℃冰箱中长期保存,备用。 1 ∶ 1 000)、Bcl-2 一抗(稀释比例 1 ∶ 2 000)和 caspase-3 一
2.5 血清中生化指标测定 抗(稀释比例1 ∶ 5 000),于4 ℃孵育过夜;用TBST洗膜3
取“2.4”项下血清,分别测定血清中血脂指标(GSP、 次、每次 10 min,加入 HRP 标记的山羊抗兔/小鼠 IgG 二
TC、TG)、氧化应激相关指标(GSH-Px、SOD、MDA)和 抗(稀释比例1 ∶ 10 000),于室温孵育2 h;用超敏ECL化
心肌损伤特异性诊断指标(CK-MB、cTnⅠ)的水平。上 学发光试剂显影、曝光。使用 Image Lab 5.2.1 软件测定
述指标的测定均按照对应试剂盒说明书方法操作。 各蛋白条带的灰度值,以目的蛋白条带灰度值与内参
2.6 心肌组织病理形态学观察 β-actin 蛋白条带灰度值的比值表示目的蛋白的表达
采用苏木精-伊红(HE)染色法进行观察。取“2.4” 水平。
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