Page 71 - 《中国药房》2023年17期
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和生理盐水;cGAS 抑制剂组大鼠鼻内滴注 450 μg/kg 温封闭 1 h;加入 cGAS、STING、GAPDH(内参)一抗(稀
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RU.521(以DMSO溶解后再以生理盐水稀释) ,并腹腔 释比例分别为 1∶1 000、1∶400、1∶10 000),4 ℃孵育过
注射等量DMSO和生理盐水;假手术组和TBI组大鼠均 夜;次日洗涤后加入 HRP 标记的山羊抗兔 IgG 二抗(稀
分别腹腔注射和鼻内滴注等量DMSO和生理盐水;每隔 释比例为 1∶20 000),室温孵育 1.5 h;化学发光试剂
24 h给药1次,共给药4次(包括造模当天的给药)。 (ECL)显色。扫描图像后用 Image J1.8.0 软件分析蛋白
2.2 大鼠神经功能评估 条带灰度,以目的蛋白条带灰度值与内参(GAPDH)蛋
采用改良神经功能缺损评分(modified neurological 白条带灰度值的比值表示目的蛋白的相对表达水平。
severity scores,mNSS)法进行评估。在第 2、3 次和末次 2.8 统计学方法
给药 2 h 后(即给药 1、2、3 d),采用 mNSS 法评估所有大 实验数据应用SPSS 25.0软件进行统计分析。符合
鼠的神经功能(包括运动、反射、感觉和平衡功能4个项 正态分布的数据以x ˉ± s表示,多组间比较采用单因素方
目),0、1~6、7~12、13~18 分分别表示无、轻度、中度、 差分析,组间多重比较采用 SNK-q 检验。检验水准
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重度神经功能障碍 。 α=0.05。
2.3 大鼠脑含水量测定 3 结果
采用干/湿比重法测定。末次 mNSS 评分结束后每 3.1 大鼠神经功能评估结果
组随机抽取6只大鼠,麻醉后断头取脑,使用电子分析天 给药 1、2、3 d 时,与假手术组比较,TBI 组大鼠
平立即称定脑组织重量(即湿重),随后放入100 ℃烤箱 mNSS 显著升高(P<0.05);与 TBI 组比较,Scu 低、高剂
中烘烤 72 h,在此期间多次称重,直至恒重(即干重)。 量组和 cGAS 抑制剂组大鼠 mNSS 均显著降低(P<
计算脑含水量:脑含水量(%)=(湿重-干重)/湿重× 0.05);与 Scu 低剂量组比较,Scu 高剂量组和 cGAS 抑制
100%。 剂组大鼠 mNSS 均显著降低(P<0.05);Scu 高剂量组和
2.4 大鼠脑组织病理学变化观察 cGAS 抑制剂组大鼠 mNSS 比较,差异无统计学意义
采用HE染色法进行观察。每组另随机抽取6只大 (P>0.05)。结果见表1。
鼠,麻醉后断头取脑,将左侧损伤部位脑组织使用4%多 表1 给药不同时间后各组大鼠的 mNSS 结果(x±s,
聚甲醛固定24 h后脱水、透明、石蜡包埋和常规切片(厚 n=24,分)
度4 µm)。切片脱蜡至水后依次进行苏木素、伊红染色, 组别 给药1 d 给药2 d 给药3 d
脱水、透明、封片后使用光学显微镜观察脑组织病理学 假手术组 0 0 0
TBI组 12.75±0.84 a 11.83±0.84 a 10.92±0.75 a
变化并拍照。 Scu低剂量组 10.29±0.76 b 9.38±0.68 b 8.50±0.54 b
2.5 大鼠脑组织细胞凋亡观察 Scu高剂量组 7.08±0.58 bc 6.25±0.58 bc 5.33±0.40 bc
采用TUNEL染色法进行观察。取“2.4”项下脑组织 cGAS抑制剂组 7.54±0.62 bc 6.58±0.54 bc 5.63±0.35 bc
F 1 373.795 1 312.047 1 768.784
石蜡切片,参照TUNEL细胞凋亡检测试剂盒说明书,依 P <0.001 <0.001 <0.001
次采用 TUNEL 反应混合液、DAPI 染色,封片后使用荧 a:与假手术组比较,P<0.05;b:与TBI组比较,P<0.05;c:与Scu低
光显微镜观察并拍照。TUNEL 染色阳性细胞(即凋亡 剂量组比较,P<0.05。
细胞)的核呈绿色荧光。每张切片中随机取6个视野,使 3.2 大鼠脑含水量测定结果
用 Image J 图像分析软件计数凋亡细胞和总细胞(结果 与假手术组比较,TBI 组大鼠脑含水量显著升高
取平均值),并计算脑组织细胞凋亡率:脑组织细胞凋亡 (P<0.05);与TBI组比较,Scu低、高剂量组和cGAS抑制
率(%)=凋亡细胞数/总细胞数×100%。 剂组大鼠脑含水量显著降低(P<0.05);与Scu低剂量组
2.6 大鼠脑组织中炎症因子含量测定 比较,Scu 高剂量组和 cGAS 抑制剂组大鼠脑含水量显
每组另随机抽取 6 只大鼠,麻醉后断头取脑,采用 著降低(P<0.05);Scu高剂量组和cGAS抑制剂组大鼠脑
ELISA法检测大鼠脑组织中炎症因子(IFN-β、CXCL10、 含水量比较,差异无统计学意义(P>0.05)。结果见表2。
TNF-α、IL-6)含量,具体操作参照相应试剂盒说明书进 3.3 大鼠脑组织病理学变化观察结果
行。检测仪器为酶标仪(波长450 nm)。 假手术组大鼠脑组织无明显异常。与假手术组比
2.7 大鼠脑组织中cGAS、STING蛋白表达测定 较,TBI组大鼠脑组织存在病理学损伤,具体表现为:大
采用 Western blot 法进行检测。将每组剩余的 6 只 量炎症细胞(包括淋巴细胞、嗜中性粒细胞等)浸润,间
大鼠麻醉后断头取脑,将左侧损伤部位脑组织使用 质水肿,明显出血,细胞排列不规则、结构模糊且出现核
RIPA裂解液裂解,提取组织中总蛋白,测定蛋白浓度后 固缩和核裂解。与 TBI 组比较,Scu 低、高剂量组和
进行变性,然后通过十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶 cGAS抑制剂组大鼠上述组织病理学损伤均有不同程度
电泳进行分离,接着将分离的蛋白转移至聚偏二氟乙烯 改善,且以 Scu 高剂量组和 cGAS 抑制剂组大鼠改善更
(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上,以5%脱脂奶粉室 明显。结果见图1。
中国药房 2023年第34卷第17期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 17 · 2109 ·